Tecnica de flotacion de faust

14-técnica de ritchie

) se reservaron para el análisis comparativo con el método de Ritchie [9] y el método de Ritchie modificado por Régis Anécimo, propuesto en este estudio.El método de Ritchie modificado por Régis Anécimo, es un método de centrifugación-sedimentación en agua tibia jabonosa. La técnica se basa en la suspensión de aproximadamente 2 g de heces en 10 mL de agua a 45°C. Las muestras se homogeneizan y se filtran a través de una gasa doblada con la ayuda de un embudo (
mm). A continuación, se centrifugaron a 2500 rpm durante 1 min; se eliminó el material sobrenadante. El sedimento se resuspendió con detergente neutro (100 μL) en combinación con 10 mL de agua a 45°C, se homogeneizó y se centrifugó a 2500 rpm durante 1 min. Se puso una gota del sedimento en una hoja con 1-2 gotas de lugol y se observó bajo un microscopio óptico Nikon Eclipse E200, con ampliación de 100x y 400x. Para generar imágenes digitales se utilizó un microscopio Zeizz AxioVision Scope A1. Para el análisis estadístico de los resultados se utilizó el programa estadístico Graph Pad Prism (versión 3.02 para Windows, Graph Pad Software, San Diego, CA, USA). Se utilizó la prueba no paramétrica de Mann-Whitney. El nivel de significación se fijó en

Técnica de flotación por centrifugación (unico)

aEcole Nationale Vétérinaire de Nantes – Oniris, Nantes, y bInstitut des Sciences de l’Evolution, UMR 5554, Montpellier, Francia; cSODEPAL, Bakoumba, y dCentre de Primatologie, Centre International de Recherche Médicale de Franceville (CIRMF), Franceville, Gabón
Los métodos coproscópicos, como las técnicas de sedimentación y flotación, se utilizan ampliamente sobre el terreno para estudiar los parásitos gastrointestinales de los simios. En una población de mandriles (Mandrillus sphinx) en libertad se han estudiado cuatro parásitos de conocido potencial zoonótico: 2 nematodos (complejo Necatoramericanus/Oesophagostomum sp. y Strongyloides sp.) y 2 especies de protozoos (Balantidium coli y Entamoeba coli). Existen diferentes técnicas coproscópicas, pero rara vez se comparan para evaluar su eficacia en la recuperación de parásitos. En este estudio se compararon 4 métodos diferentes de fácil aplicación en el campo. Se realizó un método de sedimentación y 3 métodos McMaster diferentes (utilizando soluciones de azúcar, sal y sulfato de zinc) en 47 muestras fecales recogidas de diferentes individuos de ambos sexos y todas las edades. En primer lugar, demostramos que los métodos de flotación McMaster son adecuados para detectar y, por tanto, cuantificar los quistes de protozoos de gran tamaño. En segundo lugar, la flotación McMaster con sulfato de zinc permite recuperar un mayor número de taxones de parásitos en comparación con los otros 3 métodos. Este método muestra además la mayor probabilidad de detectar cada uno de los taxones de parásitos estudiados. En conjunto, nuestros resultados muestran que la flotación McMaster con sulfato de zinc parece ser la mejor técnica para estudiar los nematodos y los grandes protozoos.

Método coproparasitoscópico de concentración por flotación

Existen muchas técnicas bien establecidas para recuperar estadios parasitarios de las heces, desde las diseñadas para recuperar estadios diagnósticos específicos (el Baermann recupera sólo larvas), hasta las técnicas de concentración diseñadas para recuperar el mayor número de organismos posible (flotación y sedimentación). Sin embargo, no existe ningún método que sea 100% eficaz para todos los estadios del parásito, y los mejores resultados se obtendrán combinando dos o más técnicas.
A medida que el potencial zoonótico y la importancia para la salud pública de varios organismos que suelen parasitar a los animales de compañía se aprecian con mayor claridad, hay que argumentar con fuerza la necesidad de reevaluar las metodologías veterinarias actuales en un esfuerzo por aumentar la sensibilidad de las pruebas. Unas pocas mejoras relativamente sencillas en los protocolos para los exámenes rutinarios de óvulos y parásitos harán que la mayoría de las prácticas privadas (y los laboratorios de referencia) alcancen un nivel más aceptable.
Las heces más antiguas pueden contener huevos, ooquistes y larvas que se han desarrollado más allá de su fase de diagnóstico. Debido a que las descripciones y fotografías son de los estadios diagnósticos de los parásitos tal y como aparecen en las heces frescas, comparar lo que se ve en las heces viejas con estas descripciones puede dar lugar a una identificación incorrecta. Se recomienda que un micrómetro ocular calibrado forme parte de su equipo microscópico, porque el tamaño y la morfología son los dos elementos clave para la correcta identificación de los parásitos intestinales.

Técnica de faust

El estudio se llevó a cabo en cumplimiento de la normativa nacional sobre bienestar animal, es decir, el Decreto Presidencial 56/13 “Adaptación de la legislación griega a la Directiva 2010/63/CE del Parlamento Europeo y del Consejo, de 22 de septiembre de 2010 (L 276/33/20.10.2010) relativa a la protección de los animales utilizados para experimentación y otros fines científicos”. Los procedimientos de diagnóstico veterinario aplicados no se inscriben en el contexto de la legislación pertinente de la UE para la experimentación con animales (Directiva 86/609/CE) y pueden realizarse para diagnosticar enfermedades de los animales y mejorar su bienestar. No se causó ningún sufrimiento durante la recogida de muestras. Los propietarios o los veterinarios registrados (privados, públicos o municipales, según el caso) dieron su consentimiento.

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